practica nº9 del tercer parcial. prueba de aglutinacion en sangre.

indice:

• objetivo
• introduccion
• desarrollo
• conclusion

objetivo: el alumno debera trabajar esta practica con sangre fresca extraida de algunos compañeros utilizando de nuevo los 9 reactivos.

aprenderemos a puntear en las laminillas y posteriormente observar las aglutinaciones en el microscopio.

introduccion: en esta practica cada uno de los integrantes fuimos participes de la practica mencionada, puesto que unos punteamos, otros separamos, otros realizaron la extraccion de sangre y dos compañeros fueron los pacientes a los cuales se les sacaron sangre; par despues ser trabajada con las dif. reactivos.

desarrollo:

1. Técnica de veno punción. 
2. Se extrae la sangre del pliegue del brazo en volumen de 2.5 ml para trasvasarla al tubo con tapón morado que contiene anticoagulante.
Una vez que se tiene la sangre fresca, se puntea en la placa escavada utilizando una pipeta pasteur con bulbo. 
3. Ya estando la sangre en la placa escavada se le aplica una gota de reactivo tipificador (a color amarrillo, b color azul y d transparente), se toman pedacitos de madera se mezclan cada uno y se espera a observar la reacción de aglutinación, la cual se presenta como si estuviera cortada la sangre en cualquiera de los tres puntos.
4. Ya observada la aglutinación limpiamos equipo, entregamos para resguardarlo debidamente.

Nota: Para poder entregar la evidencia de este trabajo se requiere tener los tres conceptos de preanalitica, analítica y postanalitica.
Este trabajo de las 3 etapas debe ser con la primera practica secuenciada hasta la practica 7, y teniendo como practica 10 la entrega de las 3 etapas en la prueba de aglutinación en plasma y prueba de aglutinación en sangre, este trabajo se debe entregar ya elaborado con todos los gráficos realizados sin recortes pero si se pueden meter gráficos digitalizados con el pie de grafico, así mismo los trabajos de investigación de cada tema los cuales se deben renombrar y enumerar para ser entregados el día 10 de junio. 

conclusion: en la practica contamos con la ayuda del encargado del laboratorio que nos hizo tener mas confianza en nosotros y nos hizo mucho mas divertida y facil la practica.

al finalizar las practicas entregamos los borradores al maestro para su posterior revisado.    

prectica nº8 del tercer parcial. aglutinacion en suero sanguineo.

indice:

• objetivo
• introduccion
• desarrollo
• conclusion

objetivo: el alumno aprendera a utilizar los diferentes materiale de laboratorio para poder realizarv la respectiva practica la cual tratara de la aglutinacion en suero sanguineo.

ademas de los materiales de laboratorio se utilizaron 9 diferentes reactivos.

introduccion: al igual que en la practica nº9(aglutinacion en sangre) todos los integrantes de la mesa participamos en la practica.

desarrollo:

 Nota: Utilizar técnica de veno punción para la extracción de sangre fresca donde se obtendrán por medio de centrifugación la separación de paquete sanguíneo (sangre y suero plasmático).

En esta prueba se debe de aplicar el tema de serologia ya que ocuparemos los tificos H y O paratíficos A y B, brusella abortus y proteus 0X19.
Esta prueba es exclusivamente de aglutinación por lo que se debe observar a tras luz de forma macroscópica y en el microscopio en objetivo 10x de forma microscópica.
1. Se utiliza la técnica de veno punción para la extracción de sangre fresca en volumen de 2.5 ml.
2. Una vez obtenida la sangre se deposita en el tubo con tapón rojo, pero antes en el inicio de extracción y vaciamiento del tubo se toma el tiempo de coagulación el cual es de 1 a 2 min. Hasta 5 y en algunas ocasiones hasta 8 min. 
3. Ya coagulada la sangre se retira el tapón del tubo y se depositan todos los tubos en la centrifuga para centrifugar a 1500 revoluciones por minuto, esto nos dará como resultado separación de paquetes.
4. Una vez que se tengan los paquetes de sangre y plasma se requiere un tubo de ensaye vació para trasvasar el plasma exclusivamente, con el que se trabajara el punteo en lamina de cristal utilizando la pipeta pasteur para puntear.
5. Ya obtenido el punteo de plasma en la lamina de cristal, se le agregara una gota de reactivo febriclin teniendo el cuidado necesario del orden de los “O, H, A, B, brusella y proteus”.
6. Ya obtenido este proceso y orden de los serotipos utilizamos pequeños pedazos del palillo de madera y mezclamos de forma individual cada uno de ellos, no se debe utilizar el mismo palillo.
7. Ya estando mezclada la solución plasmática y reactivo febriclin realizamos pequeños movimientos de rotación y traslación. Ya terminada la mezcla observamos de forma microscópica a tras luz y si obtenemos la sig. imagen punteada quiere decir que es una prueba positiva si no es así que este transparente se le de al termino de homogénea lo cual será negativa.
8. En la prueba que observamos de punteo una especie de arenilla tanto microscópicamente como microscópica nos esta indicando que tenemos una prueba de aglutinación en plasma y que debemos reportar de la sig. manera. 
Con la palabra negativo o positivo.
Positivo para todas aquellas que lograremos observar la aglutinación y negativo para las que no tengan aglutinación.
9. En este examen de laboratorio se llevan acabo las tres etapas preanalitica, analítica y postanalitica. 

materiales:
• Lamina de cristal para RF.
• Tubo con tapón rojo.
• Tubo con tapón morado anticoagulante.
• Palitos de madera.
• Torundas de algodón secas.
• Torundas de algodón alcoholizadas.
• Centrifuga.
• Microscopio.
• Reactivo Febriclin.
• Jeringa hipodérmica desechable.
• Torniquete.
• Masking tape.
• Pipeta pasteur con bulbo

conclusion: en esta practica aprendimos mucho por que el encargado del laboratorio nos apoyo demasiado lo cual hizo que nos equivocamos menos, aunque nosotros aprendimos de nuestros errores.

el dia 08 de junio realizamos 2 practicas la nº8 y la nº9.

practica nº7 del tercer parcial. observacion microscopica.

indice: 

• objetivo
• introduccion
• desarrollo
• conclusion

objetivo: los alumnos de laboratorio clinico deben realizar una tincion de gram en el frotis preparado anteriormente para despues observar lo elaborado en el microscopio.

introduccion: esta practica fue de gran interes y colaboracion para cada uno de los integrantes de la mesa.

cada uno de nosotros teñimos los frotis y posteriormente las observamos en el microscopio para poder dibujar lo que vimos.

desarrollo:Una vez teñida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo de 100x.

En este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos (bastoncitos) lo que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de gram.
La presentación en estas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características coloniales nombres de importancia medica.
Cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.

conclusion: ya que terminamos la practica entregamos los reportes al maestro con dibujos, apuntes y bitacoras.

la practica fue muy interesante por que usamos nuestra destreza y habilidad para enfocar en el objetivo 100x con aceite de inmersion lo cual fue muy dificil.

practica nº6 del tercer parcial. tincion de gram.

indice: 

• objetivo
• introduccion
• desarrollo
• conclusion

objetivo: los alumnos de laboratorio clinico deben realizar una tincion de gram en el frotis preparado anteriormente para despues observar lo elaborado en el microscopio.

introduccion: esta practica fue de gran interes y colaboracion para cada uno de los integrantes de la mesa.

cada uno de nosotros teñimos los frotis y posteriormente las observamos en el microscopio para poder dibujar lo que vimos.

desarrollo: Realizamos el proceso de tinción utilizando la tinción de gram que anteriormente ya investigamos para aplicar la técnica correspondiente de la tinción la que se basa en tiempo.

Una vez la laminilla de cristal verificamos que no se queme con tintura por lo que no sirve, y como resultado debemos elaborar un nuevo frotis.
Si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicarle un gota de aceite de inmersión, la montamos en la platina del micro aseguramos con las pinzas de la platina, una vez estando asegurada realizaremos el enfoque en 100x para que nuestra observación microscópica de resultado de poder visualizar las bacterias de forma esférica y de forma en bastón, ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas tercer plano a estas esferas se les denomina cocos.

• microscopio.
• 9 porta objetos con frotis ya elaborado.
• Caja de copli.
• 2 mecheros.
• Papel secante.
• Papel para vestir mesa.

conclusion: ya que terminamos la practica entregamos los reportes al maestro con dibujos, apuntes y bitacoras.

la practica fue muy interesante por que usamos nuestra destreza y habilidad para enfocar en el objetivo 100x con aceite de inmersion lo cual fue muy dificil.

practica nº5 del tercer parcial. elaborar un frotis.

indice:

• objetivo
• introduccion
• desarrollo
• conclusion

objetivo: el alumno debe realizar un frotis con el producto en las cajas petri, el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tincion.

introduccion: en esta practica aprendimos a esterilizar las asas bacteriologicas e implantar un frotis en el porta objetos y despues fijarlo en la flama del mechero.

desarrollo: Se toma un porta objetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja petri “bacteriológico”.

Con el asa bacteriológica se va a realizar un barrido en el porta objetos en su parte central, esterilizando primero el asa bacteriológica en la flama del mechero dejándola hasta el rojo vivo, se retira, se introduce al vaso de precipitado se toma un gota de agua con el asa se introduce a la caja petri sobre las colonias desarrolladas se toma una pequeña muestra del producto que se desarrollo en el interior y se deposita en el porta objetos dándole pequeños movimientos de izquierda a derecha para extender el producto obtenido.
Si el frotis se encuentra grueso se vuelve a esterilizar el asa bacteriológica se vuelve a tomar una gota de agua se deposita en el porta objetos sobre el producto anteriormente depositado y se realiza nuevamente la maniobra y así sucesivamente hasta que quede delgado.
Una vez terminado el proceso de barrido realizamos una maniobra sobre la flama del mechero con el mismo sin dejarlo fijamente en la flama esto se llama fijación de frotis por calor seco a fuego directo.

conclusion: esta practica fue muy divertida e interesante por que cad uno de los integrantes de la mesa realizamos un frotis individualmente; lo cual hizo que usaramos nuestra destreza.

practica nº4 del tercer parcial.observacion macroscopica.

indice: 

• objetivo
• introduccion
• desarrollo
• conclusion

objetivo: el alumno debe observar macroscopicamente las siembras en las cajas petri, despues se anotaran las observaciones con el fin de que los alumnos aprendan a distinguir los cambios y las caracteristicas que se muestren.

introduccion: los alumnos de laboratorio clinico, deben observar los tipos de siembra para ver las caracteristicas, tamaños, cambios, colores, olores, etc..de cada una de las siembras y saber a que siembras pertenecen cada una de las cajas petri.

desarrollo: El alumno realiza observación microscópica de las cajas petri anteriormente sembradas en las que se presenta desarrollo o crecimiento de colonias bacterianas.
Las cajas petri ya sembradas son depositadas en el campo esterilizado que se realiza con los dos mecheros en la parte media de la mesa.
Una vez teniendo el campo de esterilización se observan los crecimientos de las cajas petri se registra el olor que despide, el color que presenta, y se registra con grafico, dibujos y fotos.
Entramos al laboratorio preparamos los materiales, llenamos el vale de materiales y después prendimos los dos macheros pegamos un pedazo de papel para vestir la mesa y ese era nuestro campo de esterilización. Nos entregaron las cajas petri y el pie de rey.
Después abrimos las cajas petri en el campo de esterilización observamos cuidadosamente y anotamos los cambios, posteriormente olimos cada quien su siembra y describió el olor, observamos su color y medimos su tamaño.

Anotamos cada cosa de las siembras tapamos nuevamente y entregamos al encargado del laboratorio. 

conclusion: esta practica fue un poco asquerosa por que teniamos que oler cada cultivo; pero tenemos que acostumbrarnos por que esto es lo que tenemos que llevar acabo en esta especialidad.

lo que mas me llamo la atencion fue que crecieron varios germenes, bacterias y hasta hongos!!!

practica nº3 del tercer parcial. siembra en cajas petri en forma de estrias.

indice: 

• objetivo
  
• introduccion
• desarrolo
• conclusion

objetivo: 

el alumno aprendera a utilizar los diferentes materiales como: la centrifuga, el mechero de bunzen, etc..

aprenderan atrabajar mas como equipo puesto que para tomar las direntes muetras se necesitara ole ayuda de cada uno de los integrantes.

introduccion: esta practica es muy interesante porque tubimos mas conocimientos sobre todo lo que realizamos y lo hicimos con mucha dedicacion, al mismo tiempo tubimos muy buenos resultados puestomque cada integrante de mesa participo a cultivar una caja petri.

Desarrollo: 

Se realiza la toma de muestra de desecho para sembrarla en forma de estría en caja petri de la sig. manera.
1. Con el asa bacteriológica tomamos una pequeña muestra de desechos y sembramos en forma estriada en la caja petri.
2. El asa bacteriológica se pasa por la flama del mechero para esterilizarla y volver a realizar el mismo proceso con otra muestra de desecho.
3. Una vez sembradas las cajas petri se cierran o se tapan, se etiquetan aplicando los datos de la muestra y el tipo de estría (el nombre de la estría sembrada). 
4. Es importante realizar la siembra en caja petri con varilla de cristal a la cual le damos el nombre de siembra por dispersión.
5. Una vez etiquetadas las cajas se entregan al encargado (a) del laboratorio para que les de entrada al proceso de incubación. En la estufa para incubación a 37c durante 24, 48,72 hrs. 

conclusion: la practica fue todo un exito para nuetra mesa pr que haora si teniamos mas conocimientos sobre lo que hibamos a realizar, lo cual nos hizo estar mas capacitados para no equivocarnos. al final de la practica llebamos los medios de cultivo a la camara de incuvacion.