martes, 16 de junio de 2009

practica nº9 del tercer parcial. prueba de aglutinacion en sangre.

indice:
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo: el alumno debera trabajar esta practica con sangre fresca extraida de algunos compañeros utilizando de nuevo los 9 reactivos.
aprenderemos a puntear en las laminillas y posteriormente observar las aglutinaciones en el microscopio.

introduccion: en esta practica cada uno de los integrantes fuimos participes de la practica mencionada, puesto que unos punteamos, otros separamos, otros realizaron la extraccion de sangre y dos compañeros fueron los pacientes a los cuales se les sacaron sangre; par despues ser trabajada con las dif. reactivos.

desarrollo:
1. Técnica de veno punción. 
2. Se extrae la sangre del pliegue del brazo en volumen de 2.5 ml para trasvasarla al tubo con tapón morado que contiene anticoagulante.
Una vez que se tiene la sangre fresca, se puntea en la placa escavada utilizando una pipeta pasteur con bulbo. 
3. Ya estando la sangre en la placa escavada se le aplica una gota de reactivo tipificador (a color amarrillo, b color azul y d transparente), se toman pedacitos de madera se mezclan cada uno y se espera a observar la reacción de aglutinación, la cual se presenta como si estuviera cortada la sangre en cualquiera de los tres puntos.
4. Ya observada la aglutinación limpiamos equipo, entregamos para resguardarlo debidamente.

Nota: Para poder entregar la evidencia de este trabajo se requiere tener los tres conceptos de preanalitica, analítica y postanalitica.
Este trabajo de las 3 etapas debe ser con la primera practica secuenciada hasta la practica 7, y teniendo como practica 10 la entrega de las 3 etapas en la prueba de aglutinación en plasma y prueba de aglutinación en sangre, este trabajo se debe entregar ya elaborado con todos los gráficos realizados sin recortes pero si se pueden meter gráficos digitalizados con el pie de grafico, así mismo los trabajos de investigación de cada tema los cuales se deben renombrar y enumerar para ser entregados el día 10 de junio. 

conclusion: en la practica contamos con la ayuda del encargado del laboratorio que nos hizo tener mas confianza en nosotros y nos hizo mucho mas divertida y facil la practica.
al finalizar las practicas entregamos los borradores al maestro para su posterior revisado.    

prectica nº8 del tercer parcial. aglutinacion en suero sanguineo.

indice:
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo: el alumno aprendera a utilizar los diferentes materiale de laboratorio para poder realizarv la respectiva practica la cual tratara de la aglutinacion en suero sanguineo.
ademas de los materiales de laboratorio se utilizaron 9 diferentes reactivos.

introduccion: al igual que en la practica nº9(aglutinacion en sangre) todos los integrantes de la mesa participamos en la practica.

desarrollo:
 Nota: Utilizar técnica de veno punción para la extracción de sangre fresca donde se obtendrán por medio de centrifugación la separación de paquete sanguíneo (sangre y suero plasmático).
En esta prueba se debe de aplicar el tema de serologia ya que ocuparemos los tificos H y O paratíficos A y B, brusella abortus y proteus 0X19.
Esta prueba es exclusivamente de aglutinación por lo que se debe observar a tras luz de forma macroscópica y en el microscopio en objetivo 10x de forma microscópica.
1. Se utiliza la técnica de veno punción para la extracción de sangre fresca en volumen de 2.5 ml.
2. Una vez obtenida la sangre se deposita en el tubo con tapón rojo, pero antes en el inicio de extracción y vaciamiento del tubo se toma el tiempo de coagulación el cual es de 1 a 2 min. Hasta 5 y en algunas ocasiones hasta 8 min. 
3. Ya coagulada la sangre se retira el tapón del tubo y se depositan todos los tubos en la centrifuga para centrifugar a 1500 revoluciones por minuto, esto nos dará como resultado separación de paquetes.
4. Una vez que se tengan los paquetes de sangre y plasma se requiere un tubo de ensaye vació para trasvasar el plasma exclusivamente, con el que se trabajara el punteo en lamina de cristal utilizando la pipeta pasteur para puntear.
5. Ya obtenido el punteo de plasma en la lamina de cristal, se le agregara una gota de reactivo febriclin teniendo el cuidado necesario del orden de los “O, H, A, B, brusella y proteus”.
6. Ya obtenido este proceso y orden de los serotipos utilizamos pequeños pedazos del palillo de madera y mezclamos de forma individual cada uno de ellos, no se debe utilizar el mismo palillo.
7. Ya estando mezclada la solución plasmática y reactivo febriclin realizamos pequeños movimientos de rotación y traslación. Ya terminada la mezcla observamos de forma microscópica a tras luz y si obtenemos la sig. imagen punteada quiere decir que es una prueba positiva si no es así que este transparente se le de al termino de homogénea lo cual será negativa.
8. En la prueba que observamos de punteo una especie de arenilla tanto microscópicamente como microscópica nos esta indicando que tenemos una prueba de aglutinación en plasma y que debemos reportar de la sig. manera. 
Con la palabra negativo o positivo.
Positivo para todas aquellas que lograremos observar la aglutinación y negativo para las que no tengan aglutinación.
9. En este examen de laboratorio se llevan acabo las tres etapas preanalitica, analítica y postanalitica. 

materiales:
• Lamina de cristal para RF.
• Tubo con tapón rojo.
• Tubo con tapón morado anticoagulante.
• Palitos de madera.
• Torundas de algodón secas.
• Torundas de algodón alcoholizadas.
• Centrifuga.
• Microscopio.
• Reactivo Febriclin.
• Jeringa hipodérmica desechable.
• Torniquete.
• Masking tape.
• Pipeta pasteur con bulbo

conclusion: en esta practica aprendimos mucho por que el encargado del laboratorio nos apoyo demasiado lo cual hizo que nos equivocamos menos, aunque nosotros aprendimos de nuestros errores.
el dia 08 de junio realizamos 2 practicas la nº8 y la nº9.

practica nº7 del tercer parcial. observacion microscopica.

indice: 
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo: los alumnos de laboratorio clinico deben realizar una tincion de gram en el frotis preparado anteriormente para despues observar lo elaborado en el microscopio.

introduccion: esta practica fue de gran interes y colaboracion para cada uno de los integrantes de la mesa.
cada uno de nosotros teñimos los frotis y posteriormente las observamos en el microscopio para poder dibujar lo que vimos.

desarrollo:Una vez teñida la laminilla con el frotis se le aplica una gota de aceite de inmersión para poder observar el objetivo de 100x.
En este proceso de observación microscópica tenemos la facilidad de poder observar formas esféricas y bacilos (bastoncitos) lo que nos da como resultado observar las coloraciones que se presentan en la tinción de gram.
La presentación en estas nos indica que estamos observando bacterias denominadas cocos, donde debemos investigar sus características coloniales nombres de importancia medica.
Cuando observamos bastoncitos estamos tratando de identificar bacilos donde encontraremos una gran variedad de ellos de forma estructural.


conclusion: ya que terminamos la practica entregamos los reportes al maestro con dibujos, apuntes y bitacoras.
la practica fue muy interesante por que usamos nuestra destreza y habilidad para enfocar en el objetivo 100x con aceite de inmersion lo cual fue muy dificil.

practica nº6 del tercer parcial. tincion de gram.

indice: 
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo: los alumnos de laboratorio clinico deben realizar una tincion de gram en el frotis preparado anteriormente para despues observar lo elaborado en el microscopio.

introduccion: esta practica fue de gran interes y colaboracion para cada uno de los integrantes de la mesa.
cada uno de nosotros teñimos los frotis y posteriormente las observamos en el microscopio para poder dibujar lo que vimos.

desarrollo: Realizamos el proceso de tinción utilizando la tinción de gram que anteriormente ya investigamos para aplicar la técnica correspondiente de la tinción la que se basa en tiempo.
Una vez la laminilla de cristal verificamos que no se queme con tintura por lo que no sirve, y como resultado debemos elaborar un nuevo frotis.
Si la laminilla en su termino esta bien teñida acudimos a aplicarle un gota de aceite de inmersión, la montamos en la platina del micro aseguramos con las pinzas de la platina, una vez estando asegurada realizaremos el enfoque en 100x para que nuestra observación microscópica de resultado de poder visualizar las bacterias de forma esférica y de forma en bastón, ambas se pueden encontrar en una sola pieza 2, 3, 4 piezas tercer plano a estas esferas se les denomina cocos.

• microscopio.
• 9 porta objetos con frotis ya elaborado.
• Caja de copli.
• 2 mecheros.
• Papel secante.
• Papel para vestir mesa.

conclusion: ya que terminamos la practica entregamos los reportes al maestro con dibujos, apuntes y bitacoras.
la practica fue muy interesante por que usamos nuestra destreza y habilidad para enfocar en el objetivo 100x con aceite de inmersion lo cual fue muy dificil.

practica nº5 del tercer parcial. elaborar un frotis.

indice:
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo: el alumno debe realizar un frotis con el producto en las cajas petri, el cual debe ser fino y delgado para poder realizar un proceso de tincion.

introduccion: en esta practica aprendimos a esterilizar las asas bacteriologicas e implantar un frotis en el porta objetos y despues fijarlo en la flama del mechero.

desarrollo: Se toma un porta objetos limpio para poder realizar en su superficie un frotis fresco con el material de la caja petri “bacteriológico”.
Con el asa bacteriológica se va a realizar un barrido en el porta objetos en su parte central, esterilizando primero el asa bacteriológica en la flama del mechero dejándola hasta el rojo vivo, se retira, se introduce al vaso de precipitado se toma un gota de agua con el asa se introduce a la caja petri sobre las colonias desarrolladas se toma una pequeña muestra del producto que se desarrollo en el interior y se deposita en el porta objetos dándole pequeños movimientos de izquierda a derecha para extender el producto obtenido.
Si el frotis se encuentra grueso se vuelve a esterilizar el asa bacteriológica se vuelve a tomar una gota de agua se deposita en el porta objetos sobre el producto anteriormente depositado y se realiza nuevamente la maniobra y así sucesivamente hasta que quede delgado.
Una vez terminado el proceso de barrido realizamos una maniobra sobre la flama del mechero con el mismo sin dejarlo fijamente en la flama esto se llama fijación de frotis por calor seco a fuego directo.

conclusion: esta practica fue muy divertida e interesante por que cad uno de los integrantes de la mesa realizamos un frotis individualmente; lo cual hizo que usaramos nuestra destreza.

practica nº4 del tercer parcial.observacion macroscopica.

indice: 
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo: el alumno debe observar macroscopicamente las siembras en las cajas petri, despues se anotaran las observaciones con el fin de que los alumnos aprendan a distinguir los cambios y las caracteristicas que se muestren.

introduccion: los alumnos de laboratorio clinico, deben observar los tipos de siembra para ver las caracteristicas, tamaños, cambios, colores, olores, etc..de cada una de las siembras y saber a que siembras pertenecen cada una de las cajas petri.

desarrollo:
El alumno realiza observación microscópica de las cajas petri anteriormente sembradas en las que se presenta desarrollo o crecimiento de colonias bacterianas.
Las cajas petri ya sembradas son depositadas en el campo esterilizado que se realiza con los dos mecheros en la parte media de la mesa.
Una vez teniendo el campo de esterilización se observan los crecimientos de las cajas petri se registra el olor que despide, el color que presenta, y se registra con grafico, dibujos y fotos.
Entramos al laboratorio preparamos los materiales, llenamos el vale de materiales y después prendimos los dos macheros pegamos un pedazo de papel para vestir la mesa y ese era nuestro campo de esterilización. Nos entregaron las cajas petri y el pie de rey.
Después abrimos las cajas petri en el campo de esterilización observamos cuidadosamente y anotamos los cambios, posteriormente olimos cada quien su siembra y describió el olor, observamos su color y medimos su tamaño.
Anotamos cada cosa de las siembras tapamos nuevamente y entregamos al encargado del laboratorio. 
conclusion: esta practica fue un poco asquerosa por que teniamos que oler cada cultivo; pero tenemos que acostumbrarnos por que esto es lo que tenemos que llevar acabo en esta especialidad.
lo que mas me llamo la atencion fue que crecieron varios germenes, bacterias y hasta hongos!!!

practica nº3 del tercer parcial. siembra en cajas petri en forma de estrias.

indice: 
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrolo
  • conclusion
objetivo: 
el alumno aprendera a utilizar los diferentes materiales como: la centrifuga, el mechero de bunzen, etc..
aprenderan atrabajar mas como equipo puesto que para tomar las direntes muetras se necesitara ole ayuda de cada uno de los integrantes.

introduccion: esta practica es muy interesante porque tubimos mas conocimientos sobre todo lo que realizamos y lo hicimos con mucha dedicacion, al mismo tiempo tubimos muy buenos resultados puestomque cada integrante de mesa participo a cultivar una caja petri.

Desarrollo: 
Se realiza la toma de muestra de desecho para sembrarla en forma de estría en caja petri de la sig. manera.
1. Con el asa bacteriológica tomamos una pequeña muestra de desechos y sembramos en forma estriada en la caja petri.
2. El asa bacteriológica se pasa por la flama del mechero para esterilizarla y volver a realizar el mismo proceso con otra muestra de desecho.
3. Una vez sembradas las cajas petri se cierran o se tapan, se etiquetan aplicando los datos de la muestra y el tipo de estría (el nombre de la estría sembrada). 
4. Es importante realizar la siembra en caja petri con varilla de cristal a la cual le damos el nombre de siembra por dispersión.
5. Una vez etiquetadas las cajas se entregan al encargado (a) del laboratorio para que les de entrada al proceso de incubación. En la estufa para incubación a 37c durante 24, 48,72 hrs. 
conclusion: la practica fue todo un exito para nuetra mesa pr que haora si teniamos mas conocimientos sobre lo que hibamos a realizar, lo cual nos hizo estar mas capacitados para no equivocarnos. al final de la practica llebamos los medios de cultivo a la camara de incuvacion.

lunes, 15 de junio de 2009

practica nº2 del tercer parcial. tecnica de esterilizacion.

indice:
  • objetivo
  • introduccion
  • desarrollo
  • conclusion
objetivo:
el alumno tecnico en laboratorio clinico debera aprender a realizar perfectamente y sin errores la tecnica de esterilizacion para esterilizar algunas sustancias y los materiales que se usaran para las siguientes practicas teniendo como finalidad evitar que se infecten las cajas petri que se manejan.

desarrollo:
“Auto clave sistema de esterilización”El auto clave es un herramienta que se ocupa para esterilizar materiales de laboratorio reactivos como medio de cultivo y algunos otros elementos que requiera esterilización.La estructura de la auto clave es a base de material acerado e inoxidable y consta de los sig. elementos.Tapa de acero inoxidable con válvula de escape, un manómetro con forma de reloj, de un registro de libras y grados centígrados.Interna y externamente prende una manguera corrugada que nos de la facilidad de poder dejar salir el vapor.En su interior contiene un contenedor de aluminio con dos asas; una pequeña parrilla donde se depositan los productos que se van a esterilizar, tiene como sostén una parrilla de alambre en el fondo se encuentra una resistencia que opera por medio de corriente alterna por amperes en la parte exterior se encuentra un dispositivo de encendido una parrilla de baja y alta temperatura y un foco luminoso color rojo.En la parte superior se encuentran unos grilletes a base de rosca y que son medida de seguridad al cerrar se deben de manejar en forma de cruz.Se debe manejar en su interior con agua destilada.Nuestro desarrollo: Después de mezclar el medio de cultivo depositado en el matraz con agua destilada dejamos reposar un rato mientras la auto clave era encendida y se esperaba para que tuviera el calor suficiente.Luego depositamos los medios de cultivo en la auto clave con el nombre del medio de cultivo, fecha, hora y numero de la mesa.Después de sacar los medios de cultivo fueron vaciados en las cajas petri y se etiquetaron para después ponerlas en refrigeración.

materiales:
Auto clave.
• Medios de cultivo.
• Matraz elen meyer.
• Torundas de algodón.
• Masking tape.
• Agua destilada.
• Vaso de precipitado.
• Cajas petri 7.
• Papel secante.
• Papel para vestir mesa.

conclusion:
esta practica no la pudo realizar el equipo completo debido al problema que tubimos en la practica y solo se pudierob quedar dos de los integrantes.

practica nº1 del tercer parcial.medio de cultivo.

indice..
1./desarollo de la practica.
2./ materiales.
3./ llenado de las cajas petri.
4./conclusion.

objetivo.
los alumnos de laboratorio clinico aprenderan a rehidratar el medio de cultivo que se les proporcione, al mismo tiempo trabajaran en equipo lo cual hace que sepan coolaborar y participar todos juntos.

introduccion.
est practica esta realizada con una serie de pasos que para todo el equipo se son hicieron un poco complicados.
supimos trabajar en equipo y rehidratamos un medio de cultivo, posteriormente hacer una serie de apuntes los cuales los dimos al maestro para que fueran revisadas.



desarrollo:En esta práctica que se va a realizar se toma en cuenta las 3 etapas que se refieren a: preanalitica, analítica y postanalitica las cuales se deben de compaginar con la práctica secuencial.Instrucciones:
1. El alumno de laboratorio de análisis clínicos debe de estar puntual con su equipo de bioseguridad en el laboratorio.
2. Solicitar vele de material para que se habiliten todos los materiales a utilizar en su práctica de medios de cultivo.
3. Una vez estando dentro del laboratorio de forma muy primordial los integrantes deberán habilitar el equipo de esterilización (auto clave con agua destilada), estudiar técnicas de esterilización.
4. Vestido de la mesa de laboratorio con papel blanco.
5. Habilitar línea de gas LP cualquiera de los integrantes debe abrir la llave de gas, verificando que las válvulas principales de la mesa estén abiertas las cuales se encuentran debajo de la misma.
Desarrollo de la práctica: Para organizar un medio de cultivo requerimos de los siguientes materiales de cristalería científico de apoyo autoclave.Cristalería:
• Matraz elen meyer 250ml.
• Vaso de precipitado 50ml.
• Varilla de cristal como agitador.
• Vidrio de reloj.
• Cajas petri 5-7.
• Espátula.
• Balanza granataria.
• Cinta masking tape.
• Cono (embudo de cristal) elen meyer.
• Torundas de algodón.
• Papel secante.“Medio de cultivo en polvo 450gr.”
• Operaciones.
• Regla de tres. Agua destilada?
• Lápiz.

1.-Rehidratamos deacuerdo a las indicaciones que están presentes en la etiqueta de medios de cultivo la cantidad necesaria de polvo reactivo para la elaboración de 5-7 cajas petri, en la que debe de utilizar también agua destilada en volumen.
Para poder rehidratar el polvo de medio de cultivo necesitamos manejar una regla de tres lo cual nos dará un porcentaje.Pasamos el medio de cultivo que en polvo ocuparemos utilizando el vidrio de reloj.
2.-Una vez pesado el polvo se mezclara con el agua solicitada para 5-7 cajas petri. Para poder mezclar adecuadamente utilizaremos el matraz elen meyer para la mezcla en su caso dado el vaso de precipitado, agitando con la varilla de cristal para que no queden grumos.
3.-Una vez terminado este proceso de agitación y mezcla dejamos reposar el tiempo que nos marque la etiqueta de medios de cultivo.En este espacio de tiempo todo el equipo consensa su nota de desarrollo la cual lleva gráficos, dibujos, fotos, pequeños videos y así le damos tiempo al proceso de elaboración.Una vez reposado el producto se tienen ya listos los mecheros de bunzen para poder realizar el proceso de ebullición del cual se le dará un minuto de tiempo desde que este empieza, se realiza un pequeño giro de muñequeo por encima de la flama azul al mechero, siendo muy cuidadoso de que el producto no se derrame el equipo donde se contiene ya que puede ocasionar quemaduras hasta de segundo grado.
4.-Se muñequea, se observa el hervor, se retira cuidadosamente una y otra vez tomando el tiempo hasta que se cumpla el minuto una vez terminada esta acción se observa, se registra se deposita en la mesa y se deja enfriar.
“llenado de cajas petri”:
Llenado de las cajas petri deben estar en el campo de esterilización en la mesa, no fuera de el para realizar el llenado de medio de cultivo y este no se contamine.
1. Con el vaso de precipitado de 50 ml. realizaremos la actividad de vaciado pero antes esterilizar la boquilla del vasito pasando una y otra vez que se realice esta acción vaciaremos la cantidad necesaria para el llenado de la caja
.2. Ya vaciado el material en la caja petri esta se deja semitapada no en su totalidad para que no exista vapor de agua.
3. Ya estando solidificado el medio de cultivo se tapa, se estiva y se asegura con tape para etiquetar con los sig. Datos: nombre del medio de cultivo, facha, masa y hora.
Si el medio de cultivo se contamina en 24, 48, 72 hrs. Se tendrá que volver a realizar la practica pero sancionados.
conclusion: esta practica nos fue muy util porque aprendimos a crear un medio de cultivo y a sembrar las respectivas muestras de cada uno de nuestros compañeros.
posterormente veremos los diferentes cultivos en cada caja petri.

jueves, 4 de junio de 2009

tareanº 6 del tercer parcial. tipos de siembra.

siembra del inoculo en medio liquido:
  • con asa de siembra se adiciona al medio agitandola
  • con pipeta se vierte agitandose hasta su hemogeneizacion
  • con isopo o escobillon igual que con el asa de siembra
siembra de inoculo en medio solido:

tecnica de Barry: para ello en el medio de cultivo previamente fundido en tubos, se le añade el inoculo se homogeniza, se vierte en la caja petri y se deja solidificar. se utiliza para la determinacion de MCL.

siembra de muestra liquida en placa con asa de Diagralsky: consiste en distribuir la muestra de manera uniforme por la superficie del medio de cultivo, contenido en la caja. para ello adicionamos al medio solido un inoculo liquido con la pipeta graduada, posteriormente se extiende con el asa de Digralsky. se utiliza para el recuento de viables y antibigramos.

siembra por agotamiento o aislamiento en estria: se tomara con el asa de siembra una cantidad adecuada depositando el inoculo en uno de los extremos superiores de la caja, se realizara movimientos en zig-zag sin levantar el asa hasta concluir la siembra en toda la placa.

siembra por agotamiento, aislamiento en estria multiple: se toma el inoculo y se deposita en el extremo superior, extendiendose en la parte superior solamente.

flameamos y giramos ligeramente la caja continuando con el proceso anterior. repetimos la operacion 4 o 5 veces. el resultado son colonias cada vez se van arrastrando y separando mas la muestra.

tecnica de los cuatro cuadrantes: con un rotulador dividimos la caja en 4 cuadrantes iguales. con el asa extendemos por cada cuadrante el inoculo haciendo zig-zag sin flamear. finalmente observaremos como en el ultimo cuadrante las colonias se encuentran aisladas o separadas.

tecnica de los tres giros: se rotula la caja de forma analogica con el asa de platino y se siembra por estria la mitad superior de la caja. sin flamear giramos 90º y volvemos a sembrar casi hasta 3 veces.

tecnica de siembra por dilucion: se dispondra de una bacteria de tubos y se adicionara una cantidad de muestra conocida en el primer tubo, homogeneizamos, diluimos en los sig. tubos hasta obtener la dilucion deseada. una vez realizadqa la dilucion inoculamos en placas de cultivo y extendemos con el asa de Digralsky. incubamos a la temperatura precisa durante 24 horas y recontamos.

siembra del inoculo en tubo:

  • siembra por estria en tubos con medio solido inclinado: con el asa de siembra se añade al tubo una cantidad de muestra realizando movimientos ascendentes en zig-zag. este metodo es utilizado para conservar cepas durante largos periodos, asi como para la relacion de ciertas pruebas bioquimicas.

siembra por picadura: con hilo de siembra introducir el asa con el medio de cultivo hasta el fondo en la zona central de este. se utiliza en la siembra de cultivos semisolidos.

miércoles, 3 de junio de 2009

tarea nº7 del tercer parcial. frotis.

frotis:de sangre es un proceso científico que consiste en el extendido de una gota de sangre en la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente.
Es más adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto con el anticoagulante, pues este podría alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienden a deformar las células de la sangre).
Su realización es de vital importancia para obtener una orientación de:
La valoración de la estimulación eritropoyetica.
Las anomalías en la maduración nuclear y citoplásmica de las células hemáticas.
Los trastornos en la arquitectura de las células al formarse en la médula osea.
Las alteraciones singulares en la forma de las células, que son una identificación especifica de algunas enfermedades.
Algún indicador de los efectos nocivos de la quimioterapia y de la radioterapia.
La diferenciación y recuento de los elementos celulares de la sangre.
La fidelidad de la información obtenida de ellos, depende en gran parte de la calidad de las extensiones. Estas no deben ser demasiado gruesas porque las células se amontonarían y no podrían ser reconocidas, ni diferenciarse, ni demasiado delgadas porque las células se deformarían, distorsionarían y destruirían. Por eso los frotis de sangre deben ser bien nivelados y para obtener buenos resultados es necesario que:
Tanto portaobjetos como cubreobjetos deben estar bien limpios y desengrasados (prefentemente nuevos).
La gota de sangre usada para la preparación de el frotis no debe ser muy grande ni pequeña, de preferencia de el tamaño de la cabeza de un alfiler (entre 2 y 3 mm), obtenida por punción capilar.
La sangre no haya estado en contacto con anticoagulante, pues podría deformarse la morfología celular si pasase esto.
La lectura de las extensiones se hará en las zonas donde los eritrocitos "casi se tocan".

Extensión en el portaobjetos Para llevar a cabo las extensiones en portaobjeto se coloca una gota de sangre de 3 a 4 mm de diámetro, a unos 2 o 3 cm de uno de los extremos de el portaobjetos este se coloca en una superficie plana y lisa. Con el borde de otro portaobjeto, con el que se toca la gota de sangre, la cual se desliza por capilaridad a todo lo largo de el canto de dicho portaobjeto y con un movimiento rápido y uniforme, en un angulo de 45 grados se desliza el portaobjetos dejando una capa de sangre en la superficie de el otro. El espesor del extendido debe ser delgado.

tarea nº4 del tercer parcial. paratifoidea, tifoidea,brucelosis y proteus como enfermedad.

La fiebre tifoidea o fiebre entérica: es una enfermedad infecciosa producida por Salmonella typhi o Salmonella paratyphi A, B o C. Su reservorio es el hombre, y el mecanismo de contagio es fecal-oral, a través de agua y de alimentos contaminados con deyecciones.
El bacilo ingresa por vía digestiva y llega al
intestino, pasando finalmente a la sangre, causando una fase de bacteremia hacia la primera semana de la enfermedad; posteriormente se localiza en diversos órganos y produce fenómenos inflamatorios y necróticos, debidos a la liberación de endotoxinas. Finalmente, las salmonelas se eliminan al exterior por las heces.

La brucelosis, también llamada fiebre malta o fiebre ondulante: es una enfermedad que ataca a muchas especies de mamíferos dentro de los cuales se encuentra al hombre, causando la brucelosis humana. También infecta a otros mamíferos dentro de los cuales se encuentran algunos con alta relevancia económica como pueden ser los ganados bovino, equino, porcino, ovino y caprino y a otras especies silvestres.
En el hombre, su sintomatología inicial es
fiebre, cefalea, dolor vertebral con afectación de las articulaciones sacroilíacas y adenopatías (inflamación de los ganglios) en el 50% de los afectados. En casos más graves puede producir endocarditis y neumonía. La fiebre suele subir durante la noche y disminuir durante el día, con períodos de oscilación (de ahí que se dé el nombre de fiebre ondulante a la enfermedad).

El Síndrome de Proteus es una enfermedad congénita que causa un crecimiento excesivo de la piel y un desarrollo anormal de los huesos, normalmente acompañados de tumores en más de la mitad del cuerpo.

El Síndrome de Proteus: es extremadamente raro. Desde que el Dr. Michael Cohen lo identificó en 1979, sólo se han confirmado poco más de 200 casos en todo el mundo. Puede que se hayan dado más, pero los que son correctamente diagnosticados suelen tener manifestaciones evidentes del síndrome, estando considerablemente desfigurados.
Esta extraña enfermedad habría permanecido oculta de no ser por que
Joseph Merrick – inmortalizado como el "Hombre Elefante" debido al aspecto que le daban los tumores de su cabeza y el color grisaceo de su piel – fue diagnosticado más tarde de un severo caso de Síndrome de Proteus además de, neurofibromatosis, cosa que los médicos pensaban anteriormente que tenía.
Extrañamente, el brazo izquierdo y los genitales de Merrick no estaban afectados por la enfermedad que había deformado el resto de su cuerpo.
El Síndrome de Proteus causa un crecimiento anormal de la piel, huesos, músculos, tejido adiposo, y vasos sanguíneos y linfáticos.
Es una enfermedad progresiva, los niños suelen nacer sin ninguna deformidad evidente. Conforme crecen aparecen los tumores y el crecimiento de la piel y de los huesos. La gravedad y la localización de estos crecimientos asimétricos varían ampliamente, aunque suelen darse en el craneo, uno o más miembros y en la plantas de los pies. Hay un riesgo de muerte prematura en los individuos afectados debido a
trombosis y tromboembolismo pulmonar, causadas por malformaciones asociadas a este desorden en los vasos. Otros riesgos pueden venir provocados por el peso del tejido extra- Se cree que Joseph Merrick murió por el peso de su enorme y pesada cabeza que venció la resistencia de su cuello y cayó hacia atrás, fracturándoselo.
El desorden afecta a los dos sexos por igual, y puede darse en todas las etnias.

martes, 2 de junio de 2009

tarea nº5 del tercer parcial. cocos y bacilos.

cocos y bacilos:
Coco, tipo morfológico de bacteria. Tiene forma más o menos esférica (ninguna de sus dimensiones predomina claramente sobre las otras).
Diplococo: estos cocos se dividen en un sólo plano formando parejas, y dan la impresión de un grano de café, entre éstos podemos citar a los meningococos y gonococos. Algunos ocasionan enfermedades a los humanos (Ej:neumococo y estafilococo) tambien es causante de enfermendades como el de la meningitis, otros resultan inocuos o incluso beneficiosos.Los cocos se dividen en:
Diplococos: Son pares.
Estreptococos: En cadena.
Estafilococos: En racimo.
Tetradas: En número de 4.
Sarcinas: En paquetes.

Los bacilos son
bacterias que tienen forma de bastón, cuando se observan al microscopio.Los bacilos se suelen dividir en:Bacilos Gram positivos: fijan el violeta de genciana (tinción de Gram) en la pared celular porque carecen de capa de lipopolisacárido. Bacilos Gram negativos: no fijan el violeta de genciana porque poseen la capa de lipopolisacárido(peptidoglicano).
Aunque muchos bacilos son patógenos para el ser humano, algunos no hacen daño, pues son los encargados de producir algunos productos lácteos como el
yogurt (lactobacilos).A lo largo de la historia de la medicina y de la microbiología, según se iban descubriendo los bacilos, adoptaban el nombre del médico que los descubría, por ejemplo:
Bacilo de Abel:
Klebsiella ozaenae
Bacilo de Achalme:
B. perfrigens
Bacilo de Aertrycke:
Salmonella
Bacilo de Bang:
B. abortus
Bacilo de Ducrey:
H. ducreyi
Bacilo de Eberth:
S. typhi
Bacilo de Hansen:
M. leprae
Bacilo de Klebs-Löffler:
C. diphtherilllae
Bacilo de Koch:
M. tuberculosis
Bacilo de Morax:
Género Moraxella
Bacilo de Yersin:
Y. pestis

miércoles, 13 de mayo de 2009

tarea nº 3 del tercer parcial. tincion y clasificacion.

Tinción: el microscopio de campo claro es mas útil para la observación de especimenes teñidos. Los colorantes son compuestos químicos utilizados para aumentar el contraste. Existen algunos colorantes vitales que pueden añadirse directamente a una preparación en fresco; por tanto, colorean células vivas.
Tinción directa:
Tinción indirecta:
Tención azul de metileno:
Tinción de Gram:
en el examen con microscopio, los estreptococos son redondos u ovalados; en ocasiones forma celulas alongadas que se parecen a corinebacterias pleomorfas o lactobacilos. Pueden parecer gramnegativos si los cultivos son viejos o si el paciente ha sido tratado con antibióticos.
Tinción zhill- nillzen: esta tinción sirve para teñir bacterias del genero mycobacterium, el resto de las bacterias se tiñen de azul por el colorante de contraste.

tarea nº 2 del tercer parcial. medio de cultivo, clasificacion y tipos de siembras.

Medio de cultivo: los medios para hemocultivos son útiles para el desarrollo de todos estos microorganismos, así como los caldos nutritivos, comunes como el tiogliconato o la infusión de cerebro-corazón. Los hemolcutivos positivos en cadenas cocos grampositivos en cadenas en la tinción de gram, pero que no se desarrollan en el subcultivo, deben subcultivarse de nuevo con un disco de piridoxal para cubrir la posibilidad de que se trate de una bacteriemia por trate de una bacteria por abiotrophia o granulicatella.
CLASIFICACIÓN DE LOS MEDIOS DE CULTIVO:
MEDIOS ENRIQUECIDOS
Algunos microorganismos no son capaces de desarrollarse en medios de cultivo normales. Para cultivarlos necesitamos añadir sustancias altamente nutritivas como sangre, suero, extractos de tejidos animales... Estos medios son los medios enriquecidos, y los microorganismos que crecen en ellos son microorganismos exigentes o fastidiosos. Ejemplo: agar-sangre.
MEDIOS SELECTIVOS
Contienen uno o varios compuestos que inhiben el crecimiento de un determinado tipo de microorganismos y no afectan a otros tipos. Ej: El cristal violeta inhibe las gram +. Otra manera es modificar la fuente de carbono; si sustituímos la glucosa por maltosa, seleccionamos aquellos microorganismos capaces de digerirla.
MEDIOS DIFERENCIALES
Contienen distintos compuestos químicos o indicadores sobre los que determinados microorganismos adquiere coloraciones específicas o reaccionan de una manera determinada.
Ejemplo: Agar levine tiene colorantes especiales (eosina y azul de metileno) que nos permiten diferenciar a las colonias que viven en el medio. Escherichia coli forma colonias de color verde claro, mientras que enterobacter forma colonias de color rosa salmón.
MEDIOS SELECTIVOS Y DIFERENCIALES
Ejemplo: Agar Mclonkey tiene cristal violeta y sales biliares. Es un medio específico para enterobacterias. Cristal violeta inhibe a las gram +. Las sales biliares hace que sólo se desarrollen las gram - que puedan tolerar estas sales; las enterobacterias. El indicador es el rojo neutro, que es rojo a pH ácido e incoloro a pH básico. Como fuente de carbono se utilizan peptona y lactosa.
Se usa para detectar E. Coli y Salmonella. E. Coli es tolerante a la lactosa. Al digerirla, libera ácidos, por lo que se crea un medio ácido y el indicador se pone rojo. Salmonella no tolera la lactosa, por lo que no formará ácidos y formará colonias incoloras.
CULTIVOS PUROS: MEDIOS DE OBTENCIÓN
Los microorganismos en estado natural crecen de forma heterogénea o mixta. Cuando queremos estudiar un microorganismo dado, debemos aislarlo.
Un cultivo puro es aquel que contiene un solo tipo de microorganismo. El modo de obtener estos cultivos consiste en obtener colonias aisladas, que provienen de una sola célula (son clones).
Tipos de siembra en medios de cultivos:
Cultivo en medio líquido
Habitualmente se realiza en tubos o en matraces. El crecimiento se puede manifestar por enturbiamiento, por formación de velo o película, o por sedimento.
Cultivo en medio sólido
Puede ser en tubos o placas.
a) Tubos con agar inclinado. Para sembrarlos, se mueve el ansa o la punta suavemente sobre la superficie del agar con un movimiento en zigzag desde el fondo hasta la parte superior, cuidando de no dañar el agar.
b) Tubos sin inclinar. Se siembran introduciendo una punta en el centro del agar. También se llama siembra por picadura.
c) Siembra en placas. Puede ser en superficie o incorporada.
En superficie
1) Se colocan 0.1 mL de la dilución de la muestra con pipeta estéril en el centro de la placa, y se distribuye con un rastrillo estéril. 2) Se siembra con un ansa para aislar, como se explica más adelante. 3) Se siembra con un hisopo.
Incorporada
Se coloca 1 mL de la muestra en una placa estéril vacía, en el centro de la misma. Sobre ella se agregan 20 mL de medio de cultivo fundido y termostatizado a 45ºC; luego se agita la placa, moviéndola 4 veces en sentido horario, 4 en sentido antihorario, una vez de arriba a abajo, una vez hacia los costados y una vez en sentido antihorario.
Las placas se incuban invertidas, ya que la alta concentración de agua en el medio puede provocar condensación durante la incubación y si cae sobre la superficie del agar, se extiende dando un crecimiento confluente.
En medio sólido cada célula viable dará origen a una colonia y por lo tanto la siembra en placas se puede utilizar, no solo para cultivar microorganismos, sino además para contar y aislar.
En general cuando se quieren tener colonias aisladas a partir de un material determinado, es necesario diluir la muestra en tubos con suero fisiológico estéril.

tarea nº1. del tercer parcial. caracteristicas de los microorganismos.

















Características del microorganismo paramecium:
1. Pequeños, de ordinario unicelulares, algunos coloniales con pocos o numerosos individuos todos iguales; sin simetría o con simetría bilateral, radial o esférica.
2.Forma celular generalmente constante, ovalada, alargada, esférica u otra, en algunas especies.
3.núcleo diferenciado, único o múltiple; otras partes estructurales como orgánulos; sin órganos o tejidos.
4.Locomoción por flagelos, pseudópodos, cilios o movimientos de la propia célula.
5.Algunas especies con cápsulas protectoras o testas; muchas especies forman quistes o esporas resistentes para sobrevivir a las condiciones adversas o para la dispersión.
6.De vida libre, comensales, mutualísticos o parásitos.
7. Nutrición variada:
a. Holozoicos, que se alimentan de otros organismos (
bacterias, levaduras, algas, otros protozoos, etc.).
b. Saprofititos, que se alimentan de sustancias disueltas en su medio.
c. Saprozoicos, que se alimenta de sustancia animal muerta.
d. Holofíticos, también conocidos como autótrofos, es decir, que produce alimento por
fotosíntesis (como las plantas).
Caracteristicas de microorganismos pertenecientes al grupo de las enterobacterias.
Escherichia coli: Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tinción de Gram (gramnegativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelos peritricos (que rodean su cuerpo), no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa y su prueba de IMVIC es ++--. Es una bacteria utilizada frecuentemente en experimentos de genética y biotecnología molecular.
Salmonella typhi: esta formada por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
Algunas salmonellas son comunes en la piel de tortugas y de muchos reptiles, lo cual puede ser importante cuando se manipulan a la vez este tipo de mascotas y alimentos.
Proteus: Son oxidasa-negativas y ureasa-positivas. Algunas especies son mótiles Tienden a ser organismos pleomórficos, no esporulados ni capsulados y son productoras de fenilalanina desaminasa. Con la excepción de P. mirabilis, todos los Proteus reaccionan negativos con la prueba del indol.
Brucella abortus: son bacilos cortos o cococbacilos gramnegativos que se colorean mal con la coloración convencional de gram, pequeños, inmóviles y aerobios.

jueves, 7 de mayo de 2009

cuestionario 1 del segundo parcial.pie de rey.

1.- Es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, Se atribuye al cosmógrafo y matemático portugués que se llama: pedro nuñez.
2.- En qué año se le atribuye el pie de rey al cosmógrafo y matemático portugués.

3.- También se ha llamado pie de rey al: vernier.
4.- En que año se le atribuye el pie de rey al geómetra pedro Vernier.

5.- ¿Qué otro nombre recibe el origen del pie de rey?

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En los recuadros siguientes ponga el número y nombre correspondiente de la figura de medición





1 mordaza para medidas externas
2 mordaza para medidas internas
3 coliza para medida de profundidades
4 escala con divisiones en cm. y ml.
5 escala con divisiones en pulgadas y fracciones pulgadas
6 nonio para la lectura de fracciones de ml. en que este dividido
7 nonio para la lectura de fracciones de pulgas en que este dividido
8 boton de deslizamiento y freno

Descripción del Pie de Rey o Vernier. 121 palabras utilizaras para su descripción. Consta de una "regla" con una escuadra en un extremo, sobre la cual se desliza otra destinada a indicar la medida en una escala. Permite apreciar longitudes de 1/10, 1/20 y 1/50 de milímetro utilizando el nonio. Mediante piezas especiales en la parte superior y en su extremo, permite medir dimensiones internas y profundidades. Posee dos escalas: la inferior milimétrica y la superior en pulgadas. Mordazas para medidas externas. Mordazas para medidas internas. Coliza para medida de profundidades. Escala con divisiones en centímetros y milímetros. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido. Botón de deslizamiento y freno.

tarea nº 5 del segundo parcial. medio de cultivo.

medio de cultivo: es un metodo para la multiplicacion de celulas o microorganismos o para el crecimiento de tejidos en el que se prepara un medio optimo para favorecer el proceso deceado; es empleado como un metodo fundamental para el estudio de las bacterias.
los medios de cultivo contienen distintos nutrientes que van desde azucares simples hasta sustancias complejas como la sangre o el extracto de caldo de carne, para aislar o purificar una especie bacteriana a partir de una muestra formada por muchos tipos de bacterias, se siembran en un medio de cultivo solido donde las celulas que se multiplican no cambian de localizacion.

tarea nº 8 del segundo parcial. pie de rey.


pie de rey: es un instrumento para medir dimensiones de objetos relativamente pequeños, desde centimetros hasta fracciones de mililitros. es un instrumento sumamente delicado y debe maniobrarse con habilidad, cuidado y delicadeza, con precaucion de no rayarlo ni doblarlo(en especial, la coliza de profundidad).
fue el primer instrumento practico para efectuar mediciones de precision que pudo ser vendido a un precio aseccible.

practica nº3 del segundo parcial. pipeteo.

indice:
1.- objetivo
2.- introduccion
3.- desarrollo
4.- conclusion

objetivo: la practica nº3 (pipeteo) tiene como objetivo el que los alumnos de laboratorio sepan succionar el agua atrvez de las pipetas y posteriormente dejar caer la cantidad de agua succionada en el vidrio de reloj. tambien cada uno de los integrantes de la mesa hizo el pipeteo; poniendo a prueba nuestro pulso y conocimientos.

introduccion: esta practica nos fue muy util puesto que aprendimos a succionar y soltar el agua que requeriamos, para despues depositarla en la probeta graduada y asi confirmar los mililitros.

desarrollo: se utilizo todas y cada una de las pipetas para succionar el agua atraves de ella, tambien se utilizo la probeta graduada para pasar el agua de la pipeta en la probeta para comprobar los mililitros.

materiales:
  • 4 pipetas volumetricas
  • pipeta pasteur
  • pipeta 10 uuml
  • pipeta de 10 ml
  • 1 matraz erlen meyer
  • 1 probeta graduada
  • 1 pipeta automatica
  • 1 vidri de reloj
  • 10 ul: 2 gotas de la pipeta pasteur
  • 5.0 ul: 1 gota de la pipeta pasteur

conclusion:

la practica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pipetear y precisar las cantidades de agua en mililitros.

cada integrante de la mesa pasamos a pipetear y soltar el agua, lo cual hizo esta practica muy entretenida y divertida.

martes, 21 de abril de 2009

tarea nº 7 del segundo parcial. clasificacion de las bacterias: salmonella, proteus y brucela abortus

Como se clasifica la salmonella: clasificamente, se distingen tres unicas especies patogenas primarias: salmonella typhy, salmonell cholerae-suis y salmonella enteritis. a su vez, segun la serotipicacion de kauffman y white, eran clasificadas en mas de 2000 serotipos en base a los antigenos flagelares H (proteicos) y antigenos somaticos O.

Clasificacion de la proteus ox19: hay tres especies que causan infecciones oportunistas en el hombre: p. vulgaris, proteus mirabilis y proteus penneri. estas causan infecciones urinarias (mas del 10 porciento de complicaciones del tracto urinario incluyendo calculos y lesiones celulares del epitelio renal.)

Brucela abortus: es una bacteria que causa abortos e infertilidad en el ganado y fiebre ondulante en el hombre. se multiplica en el citoplasma celular evadiendo los mecanismos de muerte intracelular.

jueves, 2 de abril de 2009

practica nº2 del segundo parcial pesos y medidas.

objetivo: la practica nº2 de pesos y mediadas tiene como objetivo el que los alumnos de laboratorio, sepan pesar los materiales en la balanza granataria con o sin reactivo, ya sea en solido o liquido. al mismo tiempo aprendemos a crear un medio de cultivo en frio.

introduccion: en esta practica nos fue muy util puesto que supimos el peso real de cada material usadob en el laboratorio y posteriormente lo supimos con reactivos; todo esto fue con la ayuda de una balanza granataria.

algunos materiales que pesamos fueron:

  • pipetas graduadas
  • buretras
  • probetas
  • vaso de precipitado
  • matraz erlen meyer
  • pipeta pasteur
  • pipeta de sali
  • pipeta de toma

indice:

1.- instrucciones al desarrollar dentro del laboratorio clinico.

2.- bitacora.

3.- conclusion.

desarrollo: el alumno debe llegar puntualmente al laboratorio de analisis clinicos quimicos y portando su equipo de bioseguridad(bata blanca, gorro, guantes y cubre boca).
instrucciones al desarrollar dentro del laboratorio clinico.
materiales que se ocuparan en esta practica: pipetas graduadas, volumetricas, buretras, probetas, vaso de precipitado, matraz erlen meyer, pipetas pasteur, pipetas de sali, pipeta de toma.

1.- dentro del procedimiento se va a llevar a cabo la act. de pesar y medir los materiales de criztaleria asi como las sustancias solventes y otos tipos de reactivos que se soliciten.
2.- los pesos y medidas deben ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza granataria donde se debe pesar los materiales indicados en forma individual registrando los pesos de cada uno.
3.-una vez teniendo los pesos de los demas materiales se les aplica un reactivo ya sea solido, en polvo o liquido y se registrara el peso con el reactivo y asi poder llegar a ocupar nuestro sistema metrico decimal y anglosajon.
4.- el alumno tendra que comparar el peso del agua destilada contra el peso de un mililitro de agua corriente de la llave y para ello ocupara pipetas graduadas.
5.- introdusca la punta de la pipeta hasta el fondo de el recipiente que contiene la solucion o solvente y succione hasta que el liquido hacienda en el interior de la pipeta hacia arriba la marca superior. la succion la puede hacer con la boca si es agua y con perillas de hule si son liquidos corrosivos.
6.- en las pipetas de sally y de tomas se requiere utilizar una mangera especial con boquilla la cual se debe succionar cuidadosamente hasta la marca que contiene y registramos la medida del producto introducido en ellas que es microlitros.
7.- controla las descargas de las pipetas graduadas o volumetricas con el dedo indice de la mano, para saber si ya esta la cantidad exacta y pueda observar el menisco que se forma.
8.- realize 5 determinaciones de pipetas de dif. capacidad y para comparar el resultado o vacie el contenido de la pipeta en una probeta que tenga capacidad de recibir el liquido que contiene la pipeta.
9.- lave la pipeta o las pipetas y enjuage con agua destilada, coloque la pipeta en el porta pipetas o gradillas para que se estile y seque.
10.- antes de ocupar sus materiales de cristaleria cualquiera que sea se debe de revisar cuidadosamente y verificar que no esten bretados.

bitacora:
  • caja de petri: 87.9gr
  • medio de cultivo:
  • vigrio de reloj: 25gr
  • probeta graduada: 100ml. 98gr
  • pipeta de sally: 4.8gr
  • pipeta de 5ml: 22.9gr
  • vidri escabado: 31.7gr
  • vaso de precipitado de 500 ml y de 50m: 117.2gr, 27.6gr
  • pipeta de 10ml:
  • pipeta pesteur: 3.7gr
  • espatula de aluminio con mango de madera: 51.6gr
  • tubo de ensate: 9gr
  • mangerilla con boquilla: 3.5gr
  • cristalizador: 47.9gr
  • cristalizador con sal: 79.1gr
  • sal: 31.1gr
  • pipeta de 100ml: 3.3
  • vidrio de reloj con una gota de agua: 25.1 gr
  • vigrio de reloj con un mililitro de agua: 25.5gr

conclusion: esta practica nos fue de mucha utilidad por que aprendimos a pesar, mezclar y presizar las sustancias utilizadas durante la practica.

cada uno de los integrantes tubimos que pasar a la balanza granataria a pesar los materiales y al concluir con la practica le entregamos al profesor un borrador general por mesa en el cual apuntamos las medidas con o sin solucion(reactivo).

miércoles, 1 de abril de 2009

tarea nº5 del segundo parcial microorganismos de los medios de cultivos.

Cada bacteria individual genera por escision binaria una colonia macroscopica compuesta por docenas de millones de celulas similares o a la original.
muchas especies bacterianas son tan parecidas morfologicamente que es imposible diferenciarlas solo con el uso del microscopio; en este caso, para identificar cada tipo de especies.

aerobias:bacterias que se desarrollan en presencia de oxigeno libre.

anarobias:bacterias que se desarrollan en ausencia de oxigeno libre.

aerobias facultivas:bacteria que se desarrollan tanto en presencia como en esencia de oxigeno libre.

microafilas:bacterias que creen en presencia de pequeñas cantidades de oxigeno libre.

martes, 31 de marzo de 2009

tarea nº3 del segundo parcial .serologia

pruebas serologicas:

existen varios tipos como salmonella typhi, serologia de del toxoplasma, serologia del virus de herpes, serologia del virus de la rubeola.

la serologia se refiere al estudio del contenido de anticuerpos en el suero. ciertos microorganismos estimulan al cuerpo para producir estos anticuerpos durante una infeccion activa.

existen varias tecnicas serologicas que se utilizan dependiendo de los anticuerpos de los cuales se sospecha entre las que se pueden mencionar aglutinacion, precipitacion, fijacion del complemento, anticuerpos, fluorescentes y otras.

reacciones febriles:

en las reacciones febriles se detectan anticuerpos en el suero del paciente contra: salmonella, brucella y rickettsia.

la busqueda de antigenos febriles se considerara unicamente como prueba de escrutino para enfermedades febriles como salmonelosis, brucelosis y/o ricketsiosis.


VDRL:


MATERIAL A ESTUDIAR: sangre venenosa extraída del pliegue del codo.


propósito de la prueba: diagnostico de sífilis congénita. un resultado positivo se debe confirmar determinando anticuerpos treponemicos específicos.


prueba de embarazo:


los métodos son los que permiten detectar el embarazo en sus primeros días y antes de su principal sintoma, la suspencion de la menstruación o amenorrea.

a lo largo del tiempo se usaron diversos metodos que hoy sabemos estaban basados en que cuando una mujer quedaba embarazada aparecen en su orina hormonas antes inexistentes. los primeros metodos se usaron los efectos visibles que estas hormonas tienen sobre plantas y animales, llamados por esta razon metodos biologicos de deteccion de embarazos.


¨proteus ox19¨





¨salmonella¨





¨brucella abortus¨